Дерматоскопічні та морфологічні особливості деяких клінічних варіантів себорейного кератозу
DOI:
https://doi.org/10.30978/UJDVK2020-3-69Ключові слова:
себорейний кератоз, дерматоскопія, патоморфологічне дослідженняАнотація
Мета роботи — визначити лікарську тактику, простежити зв’язок і доповнити кореляційні дані між клінічними виявами, дерматоскопічними ознаками та гістологічною картиною типового та плаского варіантів себорейного кератозу (СК).
Матеріали та методи. Дослідження проводили на базі КУ «Запорізький обласний шкірно-венерологічний клінічний диспансер» Запорізької обласної ради. Під спостереженням перебували 20 осіб із СК (14 (70 %) жінок та 6 (30 %) чоловіків) віком від 41 до 87 років. Обстеження включало загальний огляд пацієнта, дерматоскопічне та патоморфологічне дослідження.
Результати та обговорення. Найбільш часто осередки ураження локалізувалися на шкірі тулуба — у 10 осіб, обличчя та волосистої частини голови — 5, бокової поверхні шиї — 3, рідше верхніх кінцівок — у 2 пацієнтів. І фототип за Фітцпатріком виявлено у 3 (15 %) осіб, ІІ — у 13 (65 %), ІІІ — у 4, що складає 20 %. Гістологічно акантотичний варіант СК був визначений у 14 (70 %), папіломатозний та ретикулярний — у 5 та 1 пацієнта відповідно. Дерматоскопічна картина акантотичного варіанта представлена такими критеріями: міліумоподібні кісти — 10 випадків, комедоноподібні отвори — 4, «мозкові звивини» — 5, краї, «з’їдені міллю», — 2, верукозна поверхня — 1, вогнище папіломатозного СК з верукозною, сосочкоподібною поверхнею — 1, кератома з патернами за типом «відбитка пальця» — 3. Ретикулярний (аденоїдний) варіант представлений симетричним вогнищем темно-коричневого кольору округлої форми діаметром до 0,5 см з краями, «з’їденими міллю», та міліумоподібними кістами по периферії.
Висновки. Варіабельність клінічних, дерматоскопічних та патоморфологічних виявів СК потребує подальшого пошуку нових алгоритмів терапії та диференційної діагностики зі злоякісними новоутвореннями шкіри.
Посилання
Aleksandrova AK, Sukolin GI, Smolynnikova VA. Expression of protein p27 in various forms of seborrheic keratosis (Rus). Rossiyskii Zhurnal Kozhnykhi Venericheskikh Boleznei. [Russian Journal of Skin and Venereal Diseases] (Rus) 2016;19(5):283-286.
Bowling Jonathan. Diagnostic dermoscopy. The illustrated guide. (Rus) Translated from English under the editorship of AA Kubanova. M.: Publisher Panfilova; 2018:160.
Pisklakova TP, Kostenko EI, Telesheva LF. Seborrheic keratosis: clinical characteristics and an association with the β-genus human papillomavirus (Rus). Almanah klinicheskoj mediciny. [Almanac of Clinical Medicine] (Rus) 2017;45(2):118-126.
Molochkov VA, Korneva LV, Snarskaya ES, et al. Association of seborrheic keratosis and human papillomavirus in immune-suppressedandimmunocompetentpatients: a comparisonstudy (Rus) Almanahklinicheskojmediciny [Almanac of Clinical Medicine] (Rus) 2014;34:52-55.
Alapatt GF, Sukumar D, Bhat MR. A clinicopathological and dermoscopic correlation of seborrheic keratosis. Indian Journal of Dermatology. 2016;61(6):622-627.doi: 10.4103/0019-5154.193667.
Carrera C, Segura S, Aguilera P. et al. Dermoscopic Clues for Diagnosing Melanomas That Resemble Seborrheic Keratosis. JAMA Dermatol. 2017;153(6):544-551.doi: 10.1001/jamadermatol. 2017.0129.
Chen TY, Morrison AO, Cockerell CJ. Cutaneous malignancies simulating seborrheic keratoses: An underappreciated phenomenon? J Cutan Pathol. 2017;44(9):747-748. doi:10.1111/cup. 12975.
Elder D, Massi D, Scolyer R, Willemze R. WHO classification of skin tumours. 4th ed. Lyon Cedex: IARC; 2018:26-46.
Gill D, Dorevitch A, Marks R. The prevalence of seborrheic keratoses in people aged 15 to 30 years: is the term senile keratosis redundant. Arch Dermatol. 2000;136(6):759-762. doi: 10.1001/archderm.136.6.759.
Kwon OS, Hwang EJ, Bae JH, et al. Seborrheic keratosis in the Korean males: causative role of sunlight. Photodermatol Photoimmunol Photomed. 2003;19(2):73.80. doi: 10.1034/j.1600-0781.2003.00025.x.
Lin J, Han S, Cui L, et al. Evaluation of dermoscopic algorithm for seborrhoeic keratosis: a prospective study in 412 patients. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2013;28(7):957-962. doi: 10.1111/ jdv.12241.
Minagawa A. Dermoscopy-pathology relationship in seborrheic keratosis. J Dermatol. 2017;44(5):518-524. doi: 10.1111/1346-8138.13657.
Noiles K, Vender R. Are All Seborrheic Keratoses Benign? Review of the Typical Lesion and Its Variants. Journal of Cutaneous Medicine and Surgery. 2008;12(5):203-210. doi: 10.2310/7750. 2008.07096.
Requena L, Kutzner H. Seborrheic keratosis with pseudorosettes and adamantinoid seborrheic keratosis: twone whis to pathologic variants. J Cutan Pathol. 2006;33(2):42-45.
Roh NK, Hahn HJ, Lee YW, et al. Clinical and Histopathological Investigation of Seborrheic Keratosis. Ann Dermatol. 2016;28(2):152-158. doi: 10.5021/ad.2016.28.2.152.
Soyer H. Peter, Argenziano G, Hofmann-Wellenhof R, Zalaudek I. Dermoscopy. The Essential. Second edition. Elsevier Saunders, 2012:232.
Squillace L, Cappello M, Longo C. et al. Unusual Dermoscopic Patterns of Seborrheic Keratosis. Dermatology. 2016;232(2):198-202. doi: 10.1159/000442439.
Vun Y, De’Ambrosis B, Spelman L. et al. Seborrhoeic keratosis and malignancy: collision tumour or malignant transformation? Australas J Dermatol. 2006;47(2):106-108. doi: 10.1111/j.1440-0960.2006.00242.x.
Wu YH, Hsiao PF, Chen CK. Seborrheic keratosis with bowenoid transformation: the immunohistochemical features and its association with human papillomavirus infection. Am J Dermatopathol. 2015;37(6):462-468. doi: 10.1097/DAD.0000000000000285.